Methoden des mykologischen Laboratoriums

20 g Agar-Agar abfüllen abkühlen abwiegen Agar Agar-Agar 1000 ml Agarplatten Ampullen Anmerkungen anschließend Antibiotika Askosporen aufbewahren Autoklaven sterilisieren beimpft beobachten besonders Bestimmung Boden Bodenprobe D-Glucose Dampftopf einige einstellen entsprechend erhitzen Erstarren Ethanol Falls Färben Färbung Filterpapier filtrieren Flüssigkeit folgende Fruchtkörper füllen geben geeignet gießen gleichen Glucose großen H₂O Hefen Herstellung Höhe inkubieren Isolierung jeweils kleinen Kolonien Konidien Kontrolle Kultur Länge lassen legen leicht Leitungswasser lösen Lösung Malz-Agar Malzextrakt Material Medien Medium meist Menge Methoden mischen ml Aqua dest ml Wasser muß Myzel Nachweis Nährboden oben Objektträger Osmiumtetroxid Petrischalen pH-Wert Phenol Pilze Pilzhyphen Pipetten Platten Preẞhefe Röhrchen schalen Schnitte schräg Schrägagarröhrchen sofort soll sollte sowie Sporen Sporulation Stamm Stammhaltung stark steril filtriert sterilem sterilem Wasser sterilisierten Substanzen Synthetisches Tage Teile Temperatur trocken Tropfen Überimpfung übertragen verdünnen verschiedenen verwendet Vorschrift Vorsicht Wachstum WALT waschen Wasser Wasserbad wäßrige Weitere Zellen Zimmertemperatur zufügen Zusatz